HPLC液相色譜保留時間漂移的故障排除

    保留時間不重現有兩種不同的情況：既保留時間漂移和保留時間波動。前者是指保留時間僅沿單方向發生變化，而后者指保留時間無固定規律的波動。將此兩種情況區分開來對找到問題的原因往往很有幫助。如，保留時間的漂移往往由柱老化引起；而柱老化不可能引起保留時間的無規律波動。事實上，保留時間漂移的多半原因是不同機理的色譜柱老化，如固定相流失（例如通過水解），色譜柱污染（由樣品或流動相所致）等。保留時間漂移的幾種常見的原因如下：    

一 色譜柱平衡    如果我們觀察到保留時間漂移，首先應考慮色譜柱是否已用流動相*平衡。通常平衡需要10-20個柱體積的流動相，但如果在流動相中加入少量添加劑（如離子對試劑）則需要相當長的時間來平衡色譜柱。    

流動相污染也可能是原因之一。溶于流動相中的少量污染物可能慢慢富集到色譜柱上，從而造成保留時間的漂移。應注意：水是很容易污染的流動相成分。    

二 固定相穩定性    固定相的穩定性都是有限的，即使在推薦的PH范圍內使用，固定相也會慢慢水解。例如，硅膠基質在pH4時水解穩定性達到best。水解速度與流動相類型和配體有關。雙官能團配體和三官能團配體比單官能團配體的鍵合相要穩定；長鏈鍵合相比短鏈鍵合相穩定；烷基鍵合相比氰基鍵合相穩定的多。    

經常清洗色譜柱亦會加速色譜柱固定相的水解。其他硅膠基質鍵合相在水溶液環境中也可以發生水解，如氨基鍵合相等。    

三 色譜柱污染    保留時間漂移的另一個常見原因是色譜柱污染。HPLC色譜柱是非常有效的吸附性過濾器，它可以過濾并吸附流動相攜帶的任何物質。污染源可以是：流動相本身，流動相容器，連接管、泵、進樣器和儀器密封墊，以及樣品等。通常通過實驗可判斷污染的來源。    

樣品中如果存在色譜柱上保留很強的組分，就可能是使保留時間漂移的潛在根源。這些根源通常是樣品基質。如：配藥中的賦形劑，生化樣品（如血清）中的蛋白及類脂類化合物，食品樣品中的淀粉，環境水樣中的腐殖酸等。通常樣品中的強保留組分具有較高的分子量，在此情況下，保留時間漂移的同時或其后會有反壓的增加。可以通過使用固相提取（SPE）等樣品前處理方法來去除樣品基質的影響。    

避免色譜柱污染簡單的方法是防患于未然。相比之下，找到問題的所在并設計有效的清洗步驟以去除污染物要困難的多。通常使用在給定色譜條件下的強溶劑，但并非所有污染物都可以在流動相中溶解。如THF可去除反相色譜柱中的許多污染物，但蛋白在THF中就不能溶解。DMSO常常用于去除反相色譜柱中的蛋白。    

使用保護柱是個非常有效的方法。反沖色譜柱僅是不得已時采用的辦法。    

四 流動相組成    流動相組成的緩慢變化也是保留時間漂移的常見原因。如流動相中易揮發組分的揮發及循環使用流動相等。    

五 疏水坍塌    當小孔徑、端基封口良好的反相填料色譜柱使用接近100%的水為流動相時，有時會發生分離突然喪失及被分析物質保留明顯降低或*不保留的現象，這就是疏水坍塌。此現象是由流動相不浸潤固定相表面而致。挽救的辦法實現用含大量有機組分的流動相浸潤固定相，再用高水含量的流動相進行平衡。色譜柱長期儲存也會發生此現象。使用內嵌極性基團的反相色譜柱（如Waters  SymmetryShield RP色譜柱）或非端基封口的色譜柱（如Waters  Resolve色譜柱）也可避免發生坍塌。

（一）保留時間變化    ①柱溫變化--柱恒溫    ②等度與梯度間未能充分平衡--至少用10倍柱體積的流動相平衡柱    ③緩沖液容量不夠--用>25mmol/L的緩沖液    ④柱污染--每天沖洗柱    ⑤柱內條件變化--穩定進樣條件,調節流動相    ⑥柱快達到壽命--采用保護柱

（二）保留時間縮短    

①流速增加--檢查泵,重新設定流速      

②樣品超載--降低樣品量    

③鍵合相流失--流動相PH值保持在3~7.5;檢查柱的方向    

④流動相組成變化--防止流動相蒸發或沉淀    

⑤溫度增加--柱恒溫

（三） 保留時間延長    

①流速下降--管路泄漏,更換泵密封圈,排除泵內氣泡    

②硅膠柱上活性點變化--用流動相改性劑,如加三乙胺,或采用堿至鈍化柱    

③鍵合相流失-- 同前（二）3              

④流動相組成變化--同前（二）4    

⑤溫度降低--同前（二）5